Versuchsbeschreibung: Die Versuche werden vom Regierungspräsidium Karlsruhe genehmigt. Es werden Ratten (Zuchtlinie Wistar) und Mäuse (Zuchtlinie C57BL/6N) der Firma Charles River Laboratories, Sulzfeld, verwendet. Die Tiere werden einzeln in Käfigen gehalten. Die Ratten bekommen vier Flaschen entweder mit Wasser oder Alkohol (5%, 10% und 20%) zur Auswahl angeboten. Die Mäuse bekommen wegen Platzmangels in den kleinen Käfigen nur drei Flaschen mit Wasser oder Alkohol (6% und 16%) angeboten. Die konsumierte Menge aus jeder Flasche wird täglich bestimmt. Nach 8 Wochen werden die Alkoholflaschen für 2 Wochen entfernt und danach wieder angeboten. Über ein ganzes Jahr wechseln sich 8-wöchige Alkohol- mit 2-5-wöchigen Entzugsphasen ab. Insgesamt gibt es 8 Entzugsphasen. Bei einigen Gruppen von Mäusen werden am Ende der 6. und 7. Entzugsphase vier Medikamente (je eines pro Gruppe) täglich fünf Tage lang in die Bauchhöhle injiziert. Die Wirkstoffe werden bei alkoholabhängigen Menschen zur Suchtreduzierung eingesetzt. Anschließend erhalten die Mäuse wieder die Alkoholflaschen angeboten. Die Wirkung dieser Medikamente wird auch an Ratten getestet, allerdings wird hierbei auf Daten aus einer vorangegangenen Studie zurückgegriffen. Das weitere Schicksal der Tiere wird nicht erwähnt.

Bereich: Alkoholforschung

Originaltitel: The alcohol deprivation effect model for studying relapse behavior: A comparison between rats and mice

Autoren: Valentina Vengeliene (1)*, Ainhoa Bolbao, Rainer Spanagel

Institute: Institut für Psychopharmakologie, Zentralinstitut für Seelische Gesundheit, Universität Heidelberg, J5, 68159 Mannheim

Zeitschrift: Alcohol 2014: 48; 313-320

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4616

Versuchsbeschreibung: Die Versuche wurden von der zuständigen Behörde des Landes Sachsen-Anhalt genehmigt. Die Herkunft der Gerbils (Wüstenrennmäuse) wird nicht erwähnt. Bei den Tieren wird unter Narkose ein Loch in das Schädeldach über einem bestimmten Hirnbereich gebohrt. Darüber wird eine verschließbare Plastikkammer mit Zahnzement auf dem Schädelknochen befestigt. Außerdem wird eine Aluminiumstange an der Stirn angebracht – wie wird nicht erwähnt. Mit Hilfe der Stange kann der Schädel an einem Gestell fixiert werden. Durch die Kammer werden Elektroden in das Hirngewebe eingelassen und auf und nieder bewegt. Mit den Elektroden werden Nervenströme gemessen, während gleichzeitig verschiedene Töne erschallen. An der Stelle mit der größten Nervenreaktion werden zwei der vier Elektroden durch Glaspipetten ersetzt. Mit Hilfe eines hydraulischen Spritzensystems werden über die Pipetten nacheinander zwei Farbstoffe in das Hirngewebe injiziert. Die Elektroden und Pipetten werden entfernt, der Deckel über der Kammer verschlossen und die Gerbils erwachen aus der Narkose. Sieben Tage später werden die Tiere erneut betäubt. Durch Injektion von Formalin ins Herz werden die Tiere getötet. Ihre Gehirne werden herausgeschnitten, in Scheiben geschnitten und untersucht.

Die Arbeit wurde unterstützt durch das Bundesministerium für Bildung und Forschung, das Land Sachsen-Anhalt und die Deutsche Forschungsgemeinschaft.

Bereich: Hörforschung, Hirnforschung

Originaltitel: The subcortical auditory structures in the mongolian gerbil: II. Frequency-related topography of the connections with cortical field AI

Autoren: Eike Budinger (1,3,4)*, Michael Brosch (2,3), Henning Scheich (1,3), Judith Mylius (2)

Institute: (1) Abteilung für Hörlernen und Sprache, Leibniz-Institut für Neurobiologie, Brenneckestr. 6, 39118 Magdeburg, (2) Sonderlabor für Primatenneurobiologie, Leibniz-Institut für Neurobiologie, Magdeburg, (3) Zentrum für Verhaltens-Hirnforschung, Magdeburg, (4) Klinik für Neurologie II, Otto-von-Guericke-Universität Magdeburg, Magdeburg

Zeitschrift: The Journal of Comparative Neurology 2013: 521; 2772-2797

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4615

Versuchsbeschreibung: Die Katzen wurden am Max-Planck-Institut für Hirnforschung gezüchtet. Unter Narkose werden zwei rechteckige Löcher von 8x6 mm Größe in die Schädeldecke gefräst - eins über einer bestimmten Stelle der rechten Hirnhälfte, das andere über der linken Hirnhälfte. Vor den Augen der Katzen erscheinen auf einem Bildschirm senkrechte, sich von rechts nach links oder von links nach rechts bewegende Streifen.

Über dem linken Loch wird eine Messkammer angebracht, durch die drei Elektroden in das Hirngewebe eingelassen werden können. In das Loch auf der rechten Seite werden ein Kühldraht sowie ein Thermometer auf das Hirngewebe gelegt. Bei den folgenden Experimenten werden mit den Elektroden Hirnströme auf der linke Seite gemessen vor, während und nachdem der Kühldraht eingeschaltet wurde. Die Kühlung der einen Seite deaktiviert die Nervenaktivitäten auf der anderen Seite. Nachdem das Hirngewebe wieder eine normale Temperatur erreicht hat, wird die Stelle oder die Tiefe der Elektroden variiert und die rechte Seite wird erneut gekühlt. Die Versuche erstrecken sich insgesamt über sechs Tage. Vermutlich erwachen die Katzen während dieser Zeit nicht aus der Narkose. Am Ende der Experimente werden die Tiere durch Überdosis von Pentobarbital getötet.

Die Arbeit wurde durch die Max-Planck-Gesellschaft unterstützt.

Bereich: Sehforschung, Hirnforschung

Originaltitel: An updated midline rule: Visual callosal connections anticipate shape and motion in ongoing activity across the hemispheres

Autoren: Christiane Peiker (1), Thomas Wunderle (1), David Eriksson (1), Anne Schmidt (1), Kerstin E. Schmidt (1,2)*

Institute: (1) Max-Planck-Institut für Hirnforschung, Max-von-Laue-Str. 4. 60438 Frankfurt am Main, (2) Brain Institute, Federal University of Rio Grande do Norte, Natal, Brasilien

Zeitschrift: The Journal of Neuroscience 2013: 33(46); 18036-18046

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4614

Versuchsbeschreibung: Die Versuche wurden von der Regierung Unterfranken genehmigt. Die Nacktmäuse stammen aus der Zucht von Harlan, Niederlande, und den USA. Den Mäusen werden Millionen menschlichen Lungenkrebszellen, die aus einer bestehenden Zelllinie stammen, unter die Haut in der rechten Flanke gespritzt. Das Tumorwachstum wird zweimal wöchentlich beurteilt. Sobald der Tumor eine bestimmte Größe erreicht, wird den Tieren entweder als Therapie ein Krebs auflösendes Virus oder in der Kontrollgruppe eine wirkungslose Substanz in die Schwanzvene gespritzt.

Außerdem wird die Kombinationstherapie gestartet. Hierfür wird sowohl mit Krebs infizierten als auch nicht infizierten Mäusen zusätzlich ein seit langem beim Menschen eingesetztes chemotherapeutisches Medikament (Cyclophosphamid) in den Bauchraum gespritzt. Gruppen von Tieren erhalten das Chemotherapeutikum bzw. in der Kontrollgruppe eine wirkungslose Substanz entweder einmalig oder alle 3-4 Tage über einen Versuchszeitraum von mindestens 21 Tagen verabreicht.

Bei einigen Mäusen kommt es zu starkem Tumorwachstum. Manche Tiere werden nach 20 Tagen wegen extremem Tumorwachstum aus dem Experiment genommen, d.h. sie werden getötet.

Bei anderen Tieren wird das Virus in eine Vene von mit Krebszellen infizierten Mäusen gespritzt und nach 3, 7 oder 21 Tagen die Verteilung im Körper untersucht. Zudem werden manche Tiere unter Betäubung zweimal einer Fluoreszenzmessung, bei der die Krebszellen sichtbar gemacht werden, unterzogen. Das Gewicht der Tiere wird mehrmals bis zu Tag 21 ermittelt. Alle Tiere werden auf unbekannte Art getötet, um die Tumore und Organe zu untersuchen. Parallel zu den Tierversuchen werden Zellversuche gemacht und es sind bereits klinische Studien am Menschen am Laufen.

Die Arbeit wurde von der Genelux Corporation, der Deutschen Forschungsgemeinschaft und der Universität Würzburg gefördert.

Bereich: Krebsforschung

Originaltitel: Combination treatment with oncolytic Vaccinia virus and cyclophosphamide results in synergistic antitumor effects in human lung adenocarcinoma bearing mice

Autoren: Elisabeth Hofmann (1), Stephanie Weibel (1), Aladar A. Szalay (1, 2, 3, 4, 5)*

Institute: (1) Biozentrum Universität Würzburg, Abteilung für Biochemie, Am Hubland, 97074 Würzburg, (2) Rudolf-Virchow-Zentrum für Experimentelle Biomedizin, Universität Würzburg, Josef-Schneider-Str. 2, Haus D15, 97080 Würzburg, (3) Institut für Molekulare Infektionsbiologie (IMIB), Universität Würzburg, Josef-Schneider-Str. 2/D15, 97080 Würzburg, (4) Department of Radiation Medicine and Applied Sciences and Center for Advanced Radiotherapy Technologies, University of California San Diego, La Jolla, San Diego, CA 92093, USA, (5) Genelux Corporation, San Diego Science Center, 3030 Bunker Hill Street, Suite 310, San Diego, CA 92109, USA

Zeitschrift: Journal of Translational Medicine 2014: 12; 197

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4613

Versuchsbeschreibung: Die Versuche wurden von der zuständigen Behörde in Unterfranken genehmigt und fanden in Würzburg statt. Es werden zwei Versuchsreihen durchgeführt. Unmittelbar vor Beginn der eigentlichen Versuche erhalten alle Mäuse eine Substanz in eine Vene gespritzt, die bei Hirnschäden eine schützende Wirkung haben soll.

Im ersten Versuch werden die Mäuse mittels Injektion in den Bauchraum narkotisiert. Der Schädel wird geöffnet und ein mit flüssigem Stickstoff gefüllter Kupferzylinder wird 90 Sekunden lang auf der Hirnrinde platziert. Der flüssige Stickstoff hat eine Temperatur von -196°C und dient dazu, mittels extremer Kälte eine Hirnverletzung herbeizuführen. Eine Kontrollgruppe wird der gleichen Prozedur unterzogen, jedoch wird der Zylinder nicht mit flüssigem Stickstoff gefüllt. 24 Stunden später werden die Tiere getötet und die Gehirne entnommen.

In einem anderen Versuch wird Mäusen unter Narkose ein Hirnschaden zugefügt, indem die Schädelhaut aufgeschnitten und dann ein Gewicht auf den Schädelknochen fallen gelassen wird. Bei einer Kontrollgruppe wird nur die Haut geöffnet, ohne aber eine Hirnverletzung herbeizuführen. Das Verhalten der Tiere wird bis zu 7 Tage nach Zufügen der Verletzung hinsichtlich neurologischer Auffälligkeiten beobachtet (motorische Störungen, Aufmerksamkeit, physiologisches Verhalten). Die Tötung der Tiere wird nicht erwähnt.

Die Arbeit wurde vom Interdisziplinären Zentrum für Klinische Forschung (IZKF) Würzburg, der Deutschen Forschungsgemeinschaft und der Novartis GmbH gefördert.

Bereich: Hirnforschung, Neurologie

Originaltitel: FTY720 does not protect from traumatic brain injury in mice despite reducing postraumatic inflammation

Autoren: Stine Mencl (1), Nelli Hennig (2), Sarah Hopp (1), Michael K. Schuhmann (1), Christiane Albert-Weissenberger (1), Anna-Leena Sirén (2), Christoph Kleinschnitz (1)*

Institute: (1) Neurologische Klinik und Poliklinik, Universitätsklinikum Würzburg, Josef-Schneider-Straße 11, 97080 Würzburg, (2) Neurochirurgische Klinik und Poliklinik, Universitätsklinikum Würzburg

Zeitschrift: Journal of Neuroimmunology 2014: 274; 125-131

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4612

Versuchsbeschreibung: Der Versuch wurde von der zuständigen Behörde in Köln genehmigt, fand aber vermutlich in Würzburg statt. Verwendet werden 12 Schafe. Die Tiere werden in vier gleiche Gruppen eingeteilt. Unter Narkose wird den Tieren jeweils aus dem Darmbein Knochen entnommen. Die Haut an beiden Seiten des Unterkiefers wird aufgeschnitten, die Muskeln zur Seite präpariert, um an den Kieferknochen zu gelangen. Auf der linken Unterkieferseite wird ein 1 x 2 x 0,75 cm großes Stück des aus dem Darmbein gewonnen Knochens auf den Kieferknochen gelegt und mit zwei Schrauben fixiert. Im rechten Unterkiefer erfolgt die gleiche Prozedur, zusätzlich wird jedoch Bio-Oss® der Schweizer Firma Geistlich Pharma, ein in der Zahnmedizin verwendetes Knochenersatzmaterial aus Rinderknochen, mit Blut angefeuchtet und auf das Knochenstück aufgebracht. Die Wunden werden zugenäht. Bei zwei Tieren kommt es zu Infektionen.

Nach 4, 8, 12 und 16 Wochen werden jeweils drei Schafe mit einer Überdosis Narkosemittel getötet.

Die Arbeit wurde von der Deutschen Forschungsgemeinschaft gefördert.

Bereich: Kieferchirurgie

Originaltitel: Expression of growth factors during the healing process of alveolar ridge augmentation procedures using autogenous bone grafts in combination with GTR and an anorganic bovine bone substitute

Autoren: Steffen Koerdt (1)*, Oliver Ristow (2), Andreas Wannhoff (1), Alexander C. Kübler (1), Tobias Reuther (1)

Institute: (1) Klinik für Mund-, Kiefer- und Plastische Gesichtschirurgie, Universitätsklinikum Würzburg, Pleicherwall 2, 97070, Würzburg, (2) Medizin & Ästhetik, Praxisklinik für Mund-, Kiefer- und plastische Gesichtschirurgie, München

Zeitschrift: Clinical Oral Investigation 2014: 18; 179-188

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4610

Versuchsbeschreibung: Verwendet werden 32 Ratten aus der Zucht Janvier, Frankreich. Einem Teil der Ratten wird zunächst unter Narkose eine Minipumpe unter die Haut zwischen den Schulterblättern eingepflanzt. Mit dem Gerät können kontinuierlich Substanzen verabreicht werden. Die Tiere werden im Alter von 4-5 Wochen in vier Gruppen eingeteilt. Gruppe 2 bis 4 erhalten vier Wochen lang über die Minipumpe kontinuierlich das Hormon Aldosteron verabreicht, um Bluthockdruck herbeizuführen. Gruppe 3 erhält zusätzlich täglich per Schlundsonde eine Substanz, die die Wirkung des Hormons vermindert und Gruppe 4 wiederum eine andere Substanz. Gruppe 1 dient als Kontrolle. Blutdruck und Herzschlag werden zweimal wöchentlich gemessen, indem eine Blutdruckmanschette um den Schwanz gelegt wird. Bei einigen Tieren kommt es zu einem erheblichen Anstieg des Blutdrucks und zur verstärkten Entwicklung einer Leberfibrose (krankhafte Veränderung des Lebergewebes). Nach 4 Wochen werden die Tiere zu Untersuchungszwecken getötet.

Die Arbeit wurde von der Deutschen Forschungsgemeinschaft und der Deutschen Krebshilfe gefördert.

Bereich: Pathophysiologie, Hormonforschung, Leberforschung

Originaltitel: Aldosterone induces fibrosis, oxidative stress and DNA damage in livers of male rats independent of blood pressure changes

Autoren: Nina Queisser (1), Kathrin Happ (1), Samuel Link (1), Daniel Jahn (2), Anna Zimnol (1), Andreas Geier (2), Nicole Schupp (1, 3)*

Institute: (1) Institut für Pharmakologie und Toxikologie, Universität Würzburg, Versbacher Straße 9, 97078 Würzburg, (2) Abteilung für Hepatologie, Medizinische Klinik und Poliklinik II, Universitätsklinikum Würzburg, (3) Institut für Pharmakologie und Toxikologie, Universität Düsseldorf

Zeitschrift: Toxicology and Applied Pharmacology 2014: 280; 399-407

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4609

Versuchsbeschreibung: Die Versuche wurden von der zuständigen Behörde in Maastricht, Niederlande, genehmigt und fanden vermutlich unter deutscher Federführung dort statt. Schwangeren Schafen wird ein Steroidhormon in einen Muskel gespritzt. An Tag 133-134 der Schwangerschaft (normale Schwangerschaftszeit 145-150 Tage) werden die Lämmer unter Betäubung per Kaiserschnitt als Frühgeburt entbunden und in einen Brutkasten verbracht. Die Lämmer werden an ein Beatmungsgerät angeschlossen, der Luftdruck wird variiert und Koffein wird in eine Vene gespritzt. Nach 15 Minuten werden die Tiere normalem Luftdruck ausgesetzt. Es wird eine Blutgasanalyse durchgeführt und 3 Stunden nach der Geburt werden die Tiere durch Injektion des Giftes T61 getötet.

Gleichzeitig werden Versuche mit Lungenzellen gemacht. Der Versuch wurde von Georg Bierich, Düsseldorf (InterFinanz GmbH) unterstützt.

Bereich: Neugeborenenkunde

Originaltitel: Amplification of steroid-mediated SP-B expression by physiological levels of caffeine

Autoren: Markus Fehrholz (1)*, Matthias Hütten (2, 3), Boris W. Kramer (2), Christian P. Speer (1), Steffen Kunzmann (1)

Institute: (1) Universitätsklinikum Würzburg, Kinderklinik der Bayerischen Julius-Maximilians-Universität, Josef-Schneider-Straße 2, 97080 Würzburg, (2) Department of Pediatrics, School of Mental Health and Neuroscience, School of Oncology and Developmental Biology, University Hospital Maastricht, Niederlande, (3) Klinik für Kinder- und Jugendmedizin, Medizinische Fakultät, Rheinisch-Westfälische Technische Hochschule (RWTH) Aachen

Zeitschrift: American Journal of Physiology: Lung Cellular and Molecular Physiology 2014: 306(1); L101-9

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4608

Versuchsbeschreibung: Der Versuch wurde von der Regierung Unterfranken und einer Behörde in San Diego, USA, genehmigt und fand offensichtlich teilweise in Würzburg und teilweise in den USA statt. Die genmanipulierten Nacktmäuse stammen von der Zucht Harlan Winkelmann in Borchen. Den Tieren fehlt die Thymusdrüse, was eine Schwächung des Immunsystems bewirkt, so dass eingepflanztes fremdes Gewebe nicht abgestoßen wird. Den Mäusen werden Millionen menschliche Gebärmutterhalskrebszellen unter die Haut in die rechte Flanke gespritzt. Wöchentlich bis zu 49 Tage nach der Tumorimplantation werden 6 – 7 Tiere mittels Fluoreszensbildgebung, bei der die Tumorzellen sichtbar gemacht werden, untersucht. Hierfür werden die Tiere betäubt. Die Tumorgröße und die Metastasenbildung nehmen im Verlauf des Versuchs zu. Wenn der Tumor eine bestimmte Größe erreicht hat, erhalten jeweils 12 Tiere entweder eine Viruslösung als Therapie oder als Kontrolle eine wirkungslose Substanz. Nach 14 Tagen nimmt bei der mit Virus behandelten Gruppe die Tumorgröße ab, bei der Kontrollgruppe nicht. Am Ende werden die Tiere mittels Kohlendioxid getötet.

Der Versuch wurde von der Abteilung Forschung und Entwicklung der Genelux Corporation, San Diego, USA unterstützt.

Bereich: Krebsforschung

Originaltitel: Characterization of metastasis formation and virotherapy in the human C33A cervical cancer model

Autoren: Ulrike Donat (1) Juliane Rother (1), Simon Schäfer (1), Michael Hess (1), Barbara Härtl (1, 4), Christina Kober (1), Johanna Langbein-Laugwitz (1), Jochen Stritzker (1,2), Nanhai G. Chen (2, 3) Richard J. Aguilar (2), Stephanie Weibel (1), Aladar A. Szalay (1, 2, 3, 4, 5)*

Institute: (1) Lehrstuhl für Biochemie, Biozentrum, Universität Würzburg, Am Hubland, 97074 Würzburg, (2) Genelux Corporation, San Diego Science Center, San Diego, Kalifornien, USA, (3) Department of Radiation Medicine and Applied Sciences, Rebecca & John Moores Comprehensive Cancer Center, Universität Kalifornien, San Diego, USA, (4) Genelux GmbH, Bernried, (5) Rudolf-Virchow-Zentrum für Experimentelle Biomedizin, Universität Würzburg, Josef-Schneider-Str. 2, Haus D15, 97080 Würzburg

Zeitschrift: PLoS One. 2014: 9(6); e98533

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4607

Versuchsbeschreibung: Die Versuche wurden von der zuständigen Behörde in Niedersachsen genehmigt. Verwendet werden männliche Mäuse aus der Zucht von Charles River, Sulzfeld. Es werden zwei Versuchsreihen durchgeführt. Im ersten Versuch werden 15 Mäuse ab einem Alter von 4 Wochen in Isolation in strukturlosen Käfigen aufgezogen. 13 Mäuse werden unter angereicherten Umweltbedingungen (Tunnel, Laufrad, Käfig mit zwei Abteilen) in Gruppen zu 3-4 Tieren gehalten. Im zweiten Versuch werden 14 Tiere unter angereicherten Umweltbedingungen gehalten, und 15 Tiere werden sozialer Unterlegenheit ausgesetzt. Dazu wird eine Maus als Eindringling in den Käfig einer anderen Maus gesetzt. Das Verhalten der Mäuse wird beobachtet, bis die ersten Anzeichen von Angriffen auftreten. Dann wird das fremde Tier mit einem Drahtgitter geschützt für 1 Stunde im Käfig belassen. Diese Prozedur wird 3 Wochen lang täglich wiederholt, wobei die fremde Maus jedes Mal in den Käfig einer neuen Maus gesetzt wird.

Ab einem Alter von 8 Wochen werden isoliert oder in angereichterter Umgebung gehaltene Tiere einzeln zahlreichen Verhaltenstests unterzogen.

Im Offenen-Feld-Test werden die Tiere in eine Box gesetzt und es wird 10 Minuten lang beobachtet, wie lange sie sich bewegen, aufrichten, welche Distanz sie zurücklegen und wie lange sie sich in der Mitte (ungeschützter Bereich) aufhalten. Der gleiche Versuch wird durchgeführt, wobei hier der Boden der Box mit Löchern versehen ist. Als Maß für die Neugier wird ermittelt, wie oft die Maus mit der Nase an einem Loch stöbert und wie lange sie insgesamt die Löcher erkundet.

Die Präferenz für Licht (Angst einflößend) oder Dunkelheit (geschützt) wird ermittelt, indem das Tier 5 Minuten lang in eine Vorrichtung gesetzt wird, bei dem es zwischen einer dunklen und hellen Box wählen kann.

In einem weiteren Test werden die Tiere kopfüber mit Klebeband an der Schwanzspitze an einer Stange fixiert. Es wird 6 Minuten lang beobachtet, wie die Maus kämpft, um sich aus der Situation zu befreien.

In einem Plus-förmigen Labyrinth mit 2 offenen (Angst einflößend) und 2 geschlossenen (geschützt) Armen wird 5 Minuten lang beobachtet, wie lange sich das Tier in einem offenen oder geschlossenen Arm aufhält.

In einem weiteren Test erfolgt die Angstkonditionierung mittels Elektroschock. Hierzu werden die Tiere einzeln in eine Box gesetzt, die am Boden ein Metallgitter hat, über das die Elektroschocks verabreicht werden. Am ersten Tag wird ein Ton abgespielt und unmittelbar danach erhält das Tier einen 2 Sekunde dauernden Elektroschock. Diese Prozedur wird zweimal durchgeführt. Am nächsten Tag wird die Maus in die gleiche Box gesetzt und als Maß für die Gedächtnisleistung (d.h., die Maus erinnert sich, was ihr in dieser Box wiederfahren ist) wird ermittelt, wie lange die Maus vor Angst erstarrt. Einen weiteren Tag später wird untersucht, inwieweit sich die Maus den Zusammenhang zwischen Ton und Elektroschock gemerkt hat. Das Tier wird in eine andere Box gesetzt und es wird beobachtet, wie lange die Maus erstarrt, wenn der gleiche Ton ertönt, der zuvor zusammen mit dem Elektroschock ertönte.

Das Schmerzempfinden wird ermittelt, in dem eine Maus auf eine 52°C heiße Platte gesetzt wird. Es wird die Zeit gemessen, wann das Tier reagiert, indem es springt oder die Pfoten leckt. Dann wird die Maus zum Abkühlen auf eine Metallplatte gesetzt.

Die Arbeit wurde von der Max-Planck-Gesellschaft und der Deutschen Forschungsgemeinschaft unterstützt.

Bereich: Verhaltensforschung, Psychiatrie

Originaltitel: Data calibration and reduction allows to visualize behavioural profiles of psychosocial influences in mice towards clinical domains

Autoren: Dorota M. Badowska (1), Magdalena M. Brzózka (2), Ananya Chowdhury (1, 4), Dörthe Malzahn (3)*, Moritz J. Rossner (1, 2)*

Institute: (1) Max Planck Institut für Experimentelle Medizin, Arbeitsgruppe Genexpression, Hermann-Rein-Str. 3, 37075 Göttingen, (2) Klinik für Psychiatrie und Psychotherapie, Arbeitsgruppe Molekulare Neurobiologie, Nußbaumstraße 7, 80336 München, (3) Universitätsmedizin Göttingen, Institut für Genetische Epidemiologie, Humboldtallee 32, 37073 Göttingen, (4) Friedrich Miescher Institut für Biomedizinische Forschung, Basel, Schweiz

Zeitschrift: European Archives of Psychiatry and Clinical Neuroscience 2014: DOI 10.1007/s00406-014-0532-6

Land: Deutschland

Art der Veröffentlichung: Fachzeitschrift

Dokumenten-ID: 4606